单细胞实战(1)数据下载-数据读取-seurat对象创建

2023-08-26 08:05:38 浏览数 (3)
这篇文章我们将介绍从geo数据库下载单细胞测序数据后，多种数据格式多样本情况下，如何读取数据并创建seurat对象。

本文主要结构：

一、数据下载

二、数据读取与seurat对象创建

  • 单样本情况下各种格式数据的读取，读取后seurat对象的创建
  • 多样本情况下各种格式数据的读取，读取后seurat对象的创建、合并

一、数据下载

大家自行去GEO官网(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/gds)搜索下载自己想要的单细胞测序数据。本文后面会提供数据用于示例代码测试。

GEO数据库上提供的单细胞测序数据常见格式主要有以下几种:

  • 10x Genomics格式： matrix.mtx、genes.tsv和barcodes.tsv文件是10X Genomics单细胞转录组测序数据的标准文件格式。这些文件通常存储在一个目录中，可以使用Read10X函数从R语言中读取。
    • matrix.mtx：这是一个稀疏矩阵文件，其中包含了每个单细胞的基因表达信息。矩阵中的每一行代表一个基因，每一列代表一个单细胞，矩阵中的每个元素表示该基因在该单细胞中的表达量。
    • genes.tsv（或features.tsv）：这是一个文本文件，其中包含了每个基因的信息。每一行代表一个基因，每一列代表一个属性，例如基因名称、基因编号等。
    • barcodes.tsv：这是一个文本文件，其中包含了每个单细胞的条形码信息。每一行代表一个单细胞，每一列代表一个属性，例如条形码序列、细胞类型等。
  • h5格式： 这是一种用于存储大规模数据的二进制文件格式，它可以包含多种数据类型，如矩阵、表格、图像等。
  • 压缩文本矩阵(TXT或CSV的GZ文件)： 压缩文本矩阵可以用于存储单细胞测序数据的表达矩阵或元数据，它可以减少文件的大小和传输时间 。
  • h5ad格式： 它专门用于存储和分享单细胞表达数据，它使用Anndata库来创建和读取。h5ad格式可以与cellxgene或Seurat等工具兼容，进行单细胞数据的可视化和分析 。
  • h5seurat格式： 这是一种基于h5格式的文件格式，它专门用于存储和分析多模态单细胞和空间分辨率表达实验，如CITE-seq或10X Visium等技术。h5seurat格式可以与SeuratDisk等工具兼容，进行单细胞数据的读写 。
  • R数据文件(RDS/RDATA文件)： 以R语言的数据文件格式存储表达式矩阵,需要R软件直接读取。

二、数据读取与seurat对象创建

单样本

单样本情况下每种格式的数据读取与seurat对象创建演示：

10x Genomics格式：

演示数据的下载：

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE234527

文件下载后解压，并修改名称，存放路径如下图：

读取文件并创建对象的代码参考：

代码语言：javascript复制
# 导入Seurat包
library(Seurat)

# 查看当前工作目录
getwd()

# 设置工作目录（将工作目录切换到指定路径下）
setwd("D:/project/scRNA")

# 读取10x数据，data.dir参数指定存放文件的路径
seurat_data <- Read10X(data.dir = "./data/GSE234527/352")

# 创建Seurat对象
seurat_obj <- CreateSeuratObject(counts = seurat_data,
                                   project = "GSM7470392_352",
                                   min.features = 200,
                                   min.cells = 3)


# 查看Seurat对象的基本信息
seurat_obj

h5格式：

演示数据的下载：

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE200874

下载后解压,存放路径如图

读取文件并创建对象的代码参考：

代码语言：javascript复制
# 导入Seurat包
library(Seurat)


# 查看当前工作目录
getwd()


# 设置工作目录（将工作目录切换到指定路径下）
setwd("D:/project/scRNA")


# 指定要读取的文件所在位置和文件名称
h5_file <- "./data/GSE200874/GSM6045825_wt_filtered_gene_bc_matrices_h5_1.h5"


# 读取h5格式的文件（使用Read10X_h5函数读取h5格式的单细胞数据文件）
seurat_data <- Read10X_h5(file = h5_file)


# 创建Seurat对象（使用CreateSeuratObject函数创建Seurat对象，并将读取的h5格式数据转换为Seurat对象）
seurat_obj <- CreateSeuratObject(counts = seurat_data,
                                   project = "GSM6045825_wt",
                                   min.features = 200,
                                   min.cells = 3)

# 查看Seurat对象的基本信息
seurat_obj

压缩文本矩阵(TXT或CSV的GZ文件)：

这两种文件建议先手动加压到本地查看一下文件内容格式。

CSV压缩GZ格式演示数据的下载：

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=gse130148

下载后文件的存放路径

CSV压缩GZ格式示例代码：

代码语言：javascript复制
# 导入Seurat包
library(Seurat)

# 查看当前工作目录
getwd()

# 设置工作目录（将工作目录切换到指定路径下）
setwd("D:/project/scRNA")

# 使用read.csv()函数从csv.gz格式的文件中读取数据，并将第一列作为行名
seurat_data<- read.csv(gzfile("./data/GSE130148/GSE130148_raw_counts.csv.gz"), row.names = 1)

# 使用CreateSeuratObject()函数创建Seurat对象，并在此处指定项目名称
seurat_obj <- CreateSeuratObject(counts = seurat_data,
                                   min.features = 200,
                                   min.cells = 3, 
                                   project = "GSE130148")

txt压缩GZ格式示例代码：

代码语言：javascript复制
# 导入Seurat包
library(Seurat)

# 查看当前工作目录
getwd()

# 设置工作目录（将工作目录切换到指定路径下）
setwd("D:/project/scRNA")

# 使用read.table()函数从txt.gz格式的文件中读取数据，并将第一列作为行名
seurat_data<- read.table(gzfile("./data/GSE130xxx/xxxx.txt.gz"), row.names = 1, header = TRUE, sep = "t")

# 使用CreateSeuratObject()函数创建Seurat对象，并在此处指定项目名称
seurat_obj <- CreateSeuratObject(counts = seurat_data,
                                   min.features = 200,
                                   min.cells = 3, 
                                   project = "GSE130xxx")

h5ad格式：

下载测试文件：

https://www.dropbox.com/s/ngs3p8n2i8y33hj/pbmc3k.h5ad?dl=0

代码语言：javascript复制
# 下载测试文件
# https://www.dropbox.com/s/ngs3p8n2i8y33hj/pbmc3k.h5ad?dl=0

# 导入所需的R包
library(Seurat)
# 安装SeuratDisk包
#remotes::install_github("mojaveazure/seurat-disk")
library(SeuratDisk)

# 查看当前工作目录
getwd()

# 设置工作目录（将工作目录切换到指定路径下）
setwd("D:/project/scRNA")

# 将h5ad格式文件转换为h5seurat格式文件，同时指定使用的assay为"RNA"
Convert("./data/pbmc/pbmc3k.h5ad", "h5seurat", overwrite = TRUE, assay = "RNA")

# 使用LoadH5Seurat()函数加载h5seurat格式文件，并创建Seurat对象
seurat_pbmc <- LoadH5Seurat("./data/pbmc/pbmc3k.h5seurat")

R数据文件(RDS/RDATA文件)

代码语言：javascript复制
# 使用load()函数读取RDATA文件
load("path/to/your/file.Rdata")

# 使用readRDS()函数读取RDS文件
my_data <- readRDS("path/to/your/file.rds")

多样本

多样本情况下我们主要关注10x Genomics格式和压缩文本矩阵(TXT或CSV的GZ文件)

10x Genomics格式多样本读取与对象创建：

测试数据下载：

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE234527

示例代码：

代码语言：javascript复制
# 导入Seurat包
library(Seurat)

# 查看当前工作目录
getwd()

# 设置工作目录（将工作目录切换到指定路径下）
setwd("D:/project/scRNA")

# 获取数据文件夹下的所有样本文件列表
samples <- list.files("./data/GSE234527")

# 创建一个空的列表来存储Seurat对象
seurat_list <- list()

# 读取每个样本的10x数据并创建Seurat对象
for (sample in samples) {
# 拼接文件路径
  data.path <- paste0("./data/GSE234527/", sample)

# 读取10x数据，data.dir参数指定存放文件的路径
  seurat_data <- Read10X(data.dir = data.path)

# 创建Seurat对象，并指定项目名称为样本文件名
  seurat_obj <- CreateSeuratObject(counts = seurat_data,
                                   project = sample,
                                   min.features = 200,
                                   min.cells = 3)

# 将Seurat对象添加到列表中
  seurat_list <- append(seurat_list, seurat_obj)
}

# 打印所有的Seurat对象列表
seurat_list

# 合并Seurat对象，将所有Seurat对象合并到一个对象中
seurat_combined <- merge(seurat_list[[1]], 
                         y = seurat_list[-1],
                         add.cell.ids = samples)
# 打印合并后的Seurat对象
print(seurat_combined)

h5格式多样本数据读入与对象创建：

测试数据下载：

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE200874

下载后将数据解压：

代码语言：javascript复制
# 导入Seurat包
library(Seurat)

# 设置工作目录
setwd("D:/project/scRNA")

# 获取数据文件夹下的所有h5文件列表
h5_files <- list.files("./data/GSE200874", pattern = "\.h5$")

# 创建一个空的列表来存储Seurat对象
seurat_list <- list()

# 循环读取每个h5文件的数据并创建Seurat对象
for (h5_file in h5_files) {
  # 拼接文件路径
  data.path <- paste0("./data/GSE200874/", h5_file)
  # 读取h5数据
  seurat_data <- Read10X_h5(filename = data.path)
  # 创建Seurat对象，并指定项目名称为文件名
  sample_name <- tools::file_path_sans_ext(basename(h5_file))
  seurat_obj <- CreateSeuratObject(counts = seurat_data,
                                   project = sample_name,
                                   min.features = 200,
                                   min.cells = 3)

  # 将Seurat对象添加到列表中
  seurat_list <- append(seurat_list, seurat_obj)
}

# 提取下划线前面的部分
sample_names <- sub("_.*", "", h5_files)
# 合并Seurat对象，将所有Seurat对象合并到一个对象中
seurat_combined <- merge(seurat_list[[1]],
                         y = seurat_list[-1],
                         add.cell.ids = sample_names)
# 打印合并后的Seurat对象
print(seurat_combined)

压缩文本矩阵(TXT或CSV的GZ文件)多样本：

下载测试文件：

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi

下载三个数据演示一下代码

下载后解压：

示例代码：

代码语言：javascript复制

# 导入Seurat包
library(Seurat)

# 导入Seurat包
library(Seurat)

# 设置工作目录为存放数据文件的路径
setwd("D:/project/scRNA")

# 获取所有csv.gz文件的列表
file_list <- list.files("./data/GSE150578", pattern = "\.csv\.gz$")

# 创建一个空的列表来存储Seurat对象
seurat_list <- list()

# 循环读取每个csv.gz文件的数据并创建Seurat对象
for (file in file_list) {
  # 拼接文件路径
  data.path <- paste0("./data/GSE150578/", file)
  # 读取csv.gz文件数据
  seurat_data <- read.csv(gzfile(data.path), row.names = 1)

  # 创建Seurat对象，并指定项目名称为文件名（去除后缀）
  sample_name <- tools::file_path_sans_ext(basename(file))
  seurat_obj <- CreateSeuratObject(counts = seurat_data,
                                   project = sample_name,
                                   min.features = 200,
                                   min.cells = 3)
  # 将Seurat对象添加到列表中
  seurat_list <- append(seurat_list, seurat_obj)
}

# 提取下划线前面的部分
sample_names <- sub("_.*", "", file_list)
# 合并Seurat对象，将所有Seurat对象合并到一个对象中
seurat_combined <- merge(seurat_list[[1]],
                         y = seurat_list[-1],
                         add.cell.ids = sample_names)
# 打印合并后的Seurat对象
print(seurat_combined)

大家可以使用fread()等更高效的函数代替文中的read.csv()函数，但是要注意读取后数据格式是否准确。

参考链接：https://www.jianshu.com/p/5b26d7bc37b7

参考链接：https://mp.weixin.qq.com/s/M15kWdH8eDONfakNhY-enA

生物基因 r语言单细胞 seurat 生信分析

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