引言
在使用limma包进行差异分析的过程中,我们都知道至少需要表达矩阵和分组矩阵两个文件,而在一些例子当中,还出现了一种叫差异比较矩阵的东西,那为什么有些需要有些不需要呢?不需要的会不会得到完全相反的上调下调基因?
其实差异比较矩阵的差距只在于一行代码,是 design <- model.matrix(~Group)
还是 design <- model.matrix(~ 0 Group)
,那么这个0究竟代表什么含义呢?
过程
根据官方文档 9.2
, 这一段讨论了一个简单的单通道实验,比较了两组老鼠,一组是野生型(Wt),另一组是突变型(Mu)。该实验的目标是识别两组老鼠之间的差异表达基因。为此,提供了两种不同的设计矩阵构建方法。
首先是示例输入矩阵:
FileName | Target |
---|---|
File1 | WT |
File2 | WT |
File3 | Mu |
File4 | Mu |
File5 | Mu |
可以用R语言进行创建:
代码语言:text复制# 创建文件名和目标向量
filename <- c("File1", "File2", "File3", "File4", "File5")
target <- c("WT", "WT", "Mu", "Mu", "Mu")
# 使用cbind函数构建矩阵
targets <- data.frame(cbind(filename, target))
# filename target
# 1 File1 WT
# 2 File2 WT
# 3 File3 Mu
# 4 File4 Mu
# 5 File5 Mu
第一种方法是 实验-对照组比参数化
方法,其中设计矩阵包括突变型和野生型之间差异的系数。设计矩阵是通过为所有样本分配值为1,为突变型组分配值为1,为野生型组分配值为0来创建的。设计矩阵中的第一个系数估计野生型小鼠的平均对数表达,并起到截距的作用,第二个系数估计突变型和野生型之间的差异。
HIere the first coefficient estimates the mean log-expression for wild type mice and plays the role of an intercept. The second coefficient estimates the difference between mutant and wild type.
代码语言:text复制Group <- factor(targets$Target, levels=c("WT","Mu"))
design <- model.matrix(~Group)
colnames(design) <- c("WT","MUvsWT")
# r$> design
# WT MUvsWT
# 1 1 0
# 2 1 0
# 3 1 1
# 4 1 1
# 5 1 1
# attr(,"assign")
# [1] 0 1
# attr(,"contrasts")
# attr(,"contrasts")$Group
# [1] "contr.treatment"
这种方法可以使用 R
中的 lmFit
函数实现。可以使用 eBayes
函数和 topTable
函数来识别不同表达的基因,将系数设置为“MUvsWT”
。
fit <- lmFit(eset, design)
fit <- eBayes(fit)
topTable(fit, coef = "MUvsWT", adjust = "BH")
第二种方法是组均值参数化方法,其中设计矩阵包括分别为野生型和突变型组分配的系数,并将差异提取为对比。设计矩阵是通过为野生型样本分配值为1,为突变型样本分配值为0,并为突变型样本分配值为1,为野生型样本分配值为0来创建的。
代码语言:text复制design <- model.matrix(~0 Group)
colnames(design) <- c("WT", "MU")
# r$> design
# WT MU
# 1 1 0
# 2 1 0
# 3 0 1
# 4 0 1
# 5 0 1
# attr(,"assign")
# [1] 1 1
# attr(,"contrasts")
# attr(,"contrasts")$Group
# [1] "contr.treatment"
这种方法可以使用 R
中的 makeContrasts
和 contrasts.fit
函数实现。可以使用 eBayes
函数和 topTable
函数来识别不同表达的基因,而不需要指定系数。
fit <- lmFit(eset, design)
cont.matrix <- makeContrasts(MUvsWT=MU-WT, levels=design)
fit2 <- contrasts.fit(fit, cont.matrix)
fit2 <- eBayes(fit2)
topTable(fit2, adjust="BH")
总之,这一段提供了两种不同的方法,用于创建一个单通道实验的设计矩阵,比较了两组老鼠,野生型和突变型组。这两种方法是处理-对比参数化和组均值参数化方法。这两种方法都可以使用 R
函数实现,可以用于识别两组老鼠之间的不同表达基因。
结论
因此, 结论是:
仅限两组比较,如已将实验组排在前就可以不要差异比较矩阵,否则将导致结果完全倒转。
原因是 design <- model.matrix(~Group)
会先对需要比较的组进行比较,从第二列开始以对比组填充,而 model.matrix(~ 0 Group)
只进行分组,不进行比较,如何进行比较由差异比较矩阵和 makeContrasts
函数结果控制。
引用
- 关于limma包中model.matrix()的问题-QA-生信技能树
- 差异分析是否需要比较矩阵 - basic/makeContrasts.md at master · bioconductor-china/basic · GitHub
- limma: Linear Models for Microarray and RNA-Seq Data User’s Guide